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ATCC細(xì)胞系復(fù)蘇要記住的細(xì)節(jié)及關(guān)鍵要點(diǎn)

原載自:www.longccc.com[技術(shù)資料頻道]  2026-02-06  瀏覽次數(shù):67

  在生命科學(xué)研究中,ATCC提供的標(biāo)準(zhǔn)化細(xì)胞系是實(shí)驗(yàn)可重復(fù)性和數(shù)據(jù)可靠性的基石。然而,從液氮罐中取出一支凍存管到成功建立貼壁或懸浮生長(zhǎng)的細(xì)胞群體,這一看似簡(jiǎn)單的“細(xì)胞復(fù)蘇”過(guò)程,實(shí)則暗藏諸多技術(shù)細(xì)節(jié)。稍有疏忽,輕則導(dǎo)致細(xì)胞活力下降、增殖緩慢,重則造成污染或死亡。以下是進(jìn)行ATCC細(xì)胞系復(fù)蘇時(shí)必須牢記的細(xì)節(jié)與關(guān)鍵要點(diǎn)。
  一、快速解凍是核心原則
  ATCC細(xì)胞通常采用程序降溫并保存于-196℃液氮中,其保護(hù)劑多為10%DMSO(二甲基亞砜)。DMSO在低溫下對(duì)細(xì)胞毒性較低,但一旦溫度回升至4℃以上,毒性迅速增強(qiáng)。因此,必須“快融慢凍”——復(fù)蘇時(shí)應(yīng)將凍存管立即放入37℃水浴中,輕輕搖晃,確保在1–2分鐘內(nèi)全融化。切忌在室溫下自然解凍或用高溫水加速,前者延長(zhǎng)DMSO毒性作用時(shí)間,后者可能造成熱休克。
  二、稀釋與離心操作需溫和
  解凍后,應(yīng)迅速用75%酒精擦拭管壁,移入生物安全柜。將細(xì)胞懸液緩慢加入預(yù)熱的培養(yǎng)基中(通常按1:5至1:10比例稀釋),以降低DMSO濃度。此步驟需沿管壁緩緩滴加并輕柔混勻,避免劇烈吹打損傷脆弱的復(fù)蘇細(xì)胞。隨后,是否離心取決于細(xì)胞類型:貼壁細(xì)胞建議低速離心(120–200×g,5分鐘)去除DMSO;而某些敏感懸浮細(xì)胞(如某些淋巴細(xì)胞系)則可直接接種,避免離心帶來(lái)的機(jī)械應(yīng)力。
  三、使用正確的培養(yǎng)基與培養(yǎng)條件
  ATCC為每株細(xì)胞提供詳細(xì)的培養(yǎng)指南,包括基礎(chǔ)培養(yǎng)基類型、血清濃度、是否添加L-谷氨酰胺、抗生素等。務(wù)必嚴(yán)格按照說(shuō)明配制培養(yǎng)基,并提前預(yù)熱至37℃。此外,注意細(xì)胞是否需要特殊氣體環(huán)境或額外因子。一次傳代前,建議保留部分原始凍存管作為備份,以防復(fù)蘇失敗。
  四、防污染與無(wú)菌意識(shí)貫穿全程
  整個(gè)復(fù)蘇過(guò)程必須在超凈工作臺(tái)內(nèi)進(jìn)行,所有試劑、耗材均需無(wú)菌。操作者應(yīng)穿戴實(shí)驗(yàn)服、口罩和手套,動(dòng)作規(guī)范。特別注意凍存管外壁可能攜帶液氮污染物,解凍前務(wù)必消毒充分。若發(fā)現(xiàn)培養(yǎng)基渾濁、pH異常變黃或鏡下有菌絲、運(yùn)動(dòng)顆粒,應(yīng)立即廢棄,避免交叉污染其他細(xì)胞。
  五、復(fù)蘇后觀察與一次換液時(shí)機(jī)
  細(xì)胞接種后,通常6–24小時(shí)內(nèi)完成貼壁(貼壁細(xì)胞)或恢復(fù)懸浮狀態(tài)。建議在復(fù)蘇后6–8小時(shí)一次在顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)與密度。一次換液時(shí)間很關(guān)鍵:過(guò)早可能沖走未貼牢的細(xì)胞;過(guò)晚則殘留DMSO持續(xù)毒害。一般推薦在12–16小時(shí)后更換新鮮培養(yǎng)基。
  ATCC細(xì)胞系雖經(jīng)嚴(yán)格質(zhì)控,但其“重生”仍高度依賴操作者的細(xì)致與規(guī)范。記?。嚎焖俳鈨?、溫和處理、精準(zhǔn)培養(yǎng)、嚴(yán)防污染——這十六字口訣,是確保珍貴細(xì)胞資源成功復(fù)蘇、支撐后續(xù)實(shí)驗(yàn)順利開(kāi)展的根本保障。每一次成功的復(fù)蘇,都是對(duì)科研嚴(yán)謹(jǐn)性的最好詮釋。

 

 

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